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DNAを抽出する

関東化学:シカジーニアス® DNAプレップキット(植物用)
このキットを基に、ワークショップ用のセットを準備しています

概要

  • さまざまな植物組織サンプルからDNAを精製するためのキットを使用します
  • 約40分で代謝物を効率的に除去することができます
  • 精製されたDNAは、PCR、リアルタイムPCR、サザンブロッティングなど、さまざまな実験に使用することができます

準備するもの

材料

  • 植物サンプル(湿重量 100mg以下、あるいは凍結乾燥組織 25mg以下)
  • ドライアイス
  • DNAプレップキット・アクリル特製チューブスタンド
    • 青色フィルターチューブ(サンプルろ過用)
    • 黄色フィルターチューブ(DNA結合)
    • バッファー【1】(植物組織溶解)界面活性剤 1-3%、EDTA 2-8%
    • バッファー【2】(カラム洗浄)酢酸 10-25%、酢酸カリウム 1-30%、塩化カリウム 0.1-5%
    • バッファー【3】(DNA結合促進)エタノール 25-50%、グアニジン塩酸塩 25-50%、トリス 0.1-5%
    • バッファー【4】(カラム洗浄)エタノール40-80%、EDTA 0.1-5%、トリス 0.1-5%
    • バッファー【5】(DNA溶出)EDTA 0.1-3%、トリス 0.1-3%
    • RNase A 100mg/ml(リボヌクレアーセ)【6】(RNA分解)

消耗品

  • ゴム手袋
  • 薬包紙
  • 1.5mlマイクロチューブ
  • ピペットチップ(フィルター付き)P1000

機材

  • ハサミ(サンプル細断用)
  • 乳鉢・乳棒
  • 保護メガネ
  • ごみ箱
  • マイクロピペット(100-1,000μl)
  • ヒートブロック(1.5mlマイクロチューブ用)
  • ウォーターバス・フロート
  • 遠心分離器
  • ボルテックスミキサー
  • Bento Lab(遠心分離機、サーマルサイクラー、ゲル電気泳動)

手順

  1. 薬包紙の上で、ハサミを使ってできるだけ細かくサンプルを細断します
  2. 乳鉢の中にドライアイスを入れて乳棒で細かく砕き、細断したサンプルを加えて、粉末状になるまで素早くすり潰します
  3. 半分に折った薬包紙を使って、粉末状のサンプルをドライアイスと一緒に1.5mlマイクロチューブに移し、常温あるいはヒートブロックを用いてドライアイスを気化させます(注:ドライアイスには直接手を触れないように、またマイクロチューブのフタは閉じないようにします)
  4. 400μlのバッファー【1】、4μlのRNase A(リボヌクレアーセ)【6】を加えて、ボルテックスミキサーで撹拌します
  5. 65°Cのウォーターバス、またはヒートブロックで、10〜15分間 あたためます(その間、2〜3回の転倒混和、またはボルテックスミキサーによる撹拌をおこなう)
  6. 140μlのバッファー【2】を加え、ボルテックスミキサーで撹拌をした後、氷の上に 5分間 静置します
  7. 静置後、青色フィルターチューブに移し、120秒間 14,000xg以上 で遠心します(注:Bento Labを用いる場合は、コレクションチューブを1.5mlマイクロチューブに変更し、最大の8,000xgで遠心します)
  8. チューブの底にペレットが形成されるので、このペレットを崩さないように注意しながら、新しい1.5mlマイクロチューブに移します
  9. 1.5mlマイクロチューブの目盛で分量を確認し、1.5倍量のバッファー【3】を加えて、ピペッティングにより混和します
  10. 700μlを黄色フィルタチューブに移し、30秒間 10,000xgで遠心し、ろ液を捨てて、元のマイクロチューブに再度セットします
  11. 700μlのバッファー【4】を加えて、30秒間 10,000xgで遠心し、ろ液を捨てて、元のマイクロチューブに再度セットします
  12. 300μlのバッファー【4】を加えて、120秒間 10,000xgで遠心した後、新しい1.5mlマイクロチューブにセットします
  13. 100μlのバッファー【5】を黄色フィルターチューブのメンブレンの中心に加え、室温で 5分間 静置します
  14. 1分間 最高速度で遠心し、1.5mlマイクロチューブにDNA溶液を回収します

その他

対象にあわせて、さまざまなキットが販売されています